GMS150高精(jing)度(du)氣(qi)體調控(kong)系(xi)統(tong)可(ke)以將zui多(duo)4種不同氣(qi)體進行(xing)精(jing)確混合(he)。每(mei)路(lu)輸(shu)入(ru)氣(qi)體的(de)流量(liang)使(shi)用熱式(shi)質量(liang)流量(liang)計(ji)精(jing)確(que)測量(liang)，並由內(nei)置的(de)質(zhi)量(liang)流量(liang)控(kong)制(zhi)器(qi)進行(xing)精(jing)準控(kong)制(zhi)，輸(shu)出(chu)的(de)是(shi)*混合(he)的(de)均(jun)質氣(qi)體。氣體輸入(ru)輸(shu)出(chu)使(shi)用Prestolok快速安(an)全(quan)接(jie)頭(tou)，保證使(shi)用過(guo)程中的(de)便(bian)捷(jie)性(xing)與(yu)安(an)全(quan)性(xing)。

GMS150高精(jing)度(du)氣(qi)體調控(kong)系(xi)統(tong)可(ke)用於二氧(yang)化(hua)碳、氮(dan)氣、壹(yi)氧(yang)化(hua)碳、甲(jia)烷、氨氣以及(ji)其(qi)他(ta)氣體的(de)濃(nong)度(du)控(kong)制(zhi)。

GMS150高精(jing)度(du)氣(qi)體調控(kong)系(xi)統(tong)分(fen)為GMS150版和(he)GMS150-MICRO版，其(qi)中(zhong)GMS150版精度(du)更高(gao)，GMS150-MICRO版可調控(kong)流速更(geng)大。

應(ying)用領(ling)域(yu)

•  與(yu)植(zhi)物(wu)培養(yang)箱(xiang)、光養(yang)生(sheng)物反(fan)應(ying)器(qi)等聯(lian)用(yong)，

  進行(xing)精(jing)確氣(qi)體控(kong)制(zhi)培養(yang)

•  模擬(ni)不同CO₂濃度(du)環(huan)境，研究(jiu)溫(wen)室效(xiao)應(ying)

  對(dui)植(zhi)物(wu)/藻類(lei)的(de)影(ying)響

•  研究(jiu)CO₂濃度(du)與(yu)光合(he)作(zuo)用(yong)的(de)關(guan)系(xi)

• 模擬(ni)煙氣(qi)等有(you)害(hai)氣(qi)體對(dui)植(zhi)物(wu)/藻類(lei)的(de)影(ying)響

• 研究(jiu)植(zhi)物(wu)/藻類(lei)對(dui)有害(hai)氣(qi)體的(de)處(chu)理(li)與(yu)利用

   

技術參(can)數：

• 測量(liang)原理(li)：熱式(shi)質量(liang)流量(liang)測量法(fa)

• 可調控(kong)氣(qi)體：空氣(qi)、氮(dan)氣(qi)、二氧(yang)化(hua)碳、氧(yang)氣(qi)、壹(yi)氧(yang)化(hua)碳、甲(jia)烷、氨氣等幹(gan)燥純凈、無腐(fu)蝕(shi)性(xing)、無(wu)爆(bao)炸(zha)性(xing)氣(qi)體，氣源(yuan)需(xu)用(yong)戶(hu)自(zi)備

• 調控(kong)通(tong)道(dao)：標(biao)配為2通道(dao)，通(tong)道(dao)1為Air-N₂，通道(dao)2為CO₂，zui多可(ke)擴(kuo)展(zhan)為4通道(dao)

• 工(gong)作(zuo)溫(wen)度：15-50℃

• 輸入(ru)/輸出(chu)接(jie)頭(tou)：Parker Prestolok接頭(tou)(6mm)

• 輸入(ru)壓(ya)力：3-5bar

• 密封(feng)：氟(fu)化(hua)橡膠(jiao)

• 顯(xian)示屏(ping)：8×21字(zi)符液(ye)晶顯(xian)示屏(ping)

• 尺(chi)寸：37cm×28×15cm

• 供電(dian)：115-230V交流電(dian)

• 可聯(lian)用(yong)儀(yi)器(qi)：FMT150藻類(lei)培養(yang)與(yu)在線監(jian)測(ce)系統(tong)、MC1000 8通道(dao)藻(zao)類(lei)培養(yang)與(yu)在線監(jian)測(ce)系統(tong)、FytoScope系列(lie)智能LED光源(yuan)生(sheng)長箱、用(yong)戶(hu)自(zi)行(xing)設(she)計(ji)的(de)培養(yang)箱(xiang)或(huo)反(fan)應(ying)器(qi)（可提(ti)供氣(qi)路(lu)連(lian)接(jie)方(fang)案(an)）等

                 與(yu)中(zhong)科院(yuan)海洋(yang)所自行(xing)設(she)計(ji)的(de)培養(yang)裝(zhuang)置聯(lian)用(yong)的(de)GMS150

GMS150版調控(kong)參(can)數：

•  zui小流量(liang)範圍(wei)：0.02 - 1 ml/min

• zui大流量(liang)範圍(wei)：20 - 1000 ml/min

• 可定(ding)制(zhi)流量(liang)範圍(wei)：可(ke)在zui大流量(liang)和(he)zui小(xiao)流量(liang)之間定(ding)制(zhi)。標(biao)準配(pei)置通道(dao)1(Air-N₂): 20-1000 ml/min；通道(dao)2(CO₂): 0.4-20 ml/min；可調控(kong)CO₂濃度(du)0.04% - 100%（實際調控(kong)濃(nong)度(du)與(yu)流量(liang)有關）

• 精度(du)：±0.5%，加全(quan)量(liang)程±0.1%（3-5ml/min為全(quan)量(liang)程±1%，＜3ml/min為全(quan)量(liang)程±2%）

• 穩定(ding)性(xing)：<全(quan)量(liang)程±0.1%（參(can)考(kao)1ml/min N₂）

• 穩定(ding)時(shi)間：1~2s

•  預(yu)熱時(shi)間：30min預(yu)熱達(da)到*精(jing)度(du)，2min預(yu)熱偏(pian)差±2%

•  溫度(du)靈(ling)敏(min)度：<0.05%/℃

•  壓力靈(ling)敏度(du)：0.1%/bar（參(can)考(kao)N₂）

• 姿態靈敏度：1bar 壓力下(xia)與(yu)水(shui)平(ping)面保(bao)持90°zui大誤(wu)差0.2%（參(can)考(kao)N₂）

•  重量(liang)：7kg

GMS150-MICRO版調控(kong)參(can)數：

• zui小流量(liang)範圍(wei)：0.2 - 10 ml/min

• zui大流量(liang)範圍(wei)：100 - 5000 ml/min

• 可定(ding)制(zhi)流量(liang)範圍(wei)：可(ke)在zui大流量(liang)和(he)zui小(xiao)流量(liang)之間定(ding)制(zhi)。標(biao)準配(pei)置通道(dao)1(Air-N₂): 40-2000 ml/min；通道(dao)2(CO₂): 0.8-40 ml/min；可調控(kong)CO₂濃度(du)0.04% - 100%（實際調控(kong)濃(nong)度(du)與(yu)流量(liang)有關）

•  精度(du)：±1.5%，加全(quan)量(liang)程±0.5%

• 重復(fu)性(xing)：流量(liang)<20 ml/min為全(quan)量(liang)程±0.5%，流量(liang)>20 ml/min為實際流量(liang)±0.5%

• 穩定(ding)時(shi)間：1s

• 預(yu)熱時(shi)間：30min預(yu)熱達(da)到*精(jing)度(du)，2min預(yu)熱偏(pian)差±2%

• 溫度(du)靈(ling)敏(min)度：零點<0.01%/℃，滿度(du)<0.02%/℃

• 姿態靈敏度：1bar 壓力下(xia)與(yu)水(shui)平(ping)面保(bao)持90°zui大誤(wu)差0.5 ml/min（參(can)考(kao)N₂）

• 重量(liang)：5kg

應(ying)用案(an)例(li)：

與(yu)FMT150藻類(lei)培養(yang)與(yu)在線監(jian)測(ce)系統(tong)聯(lian)用(yong)研究(jiu)藍(lan)藻(zao)Cyanothece sp. ATCC 51142 的(de)超(chao)日代謝節律（Cerveny, 2013, PNAS）

產地(di)：歐(ou)洲

參(can)考(kao)文獻(xian)：

1. Sarayloo E, et al. 2018. Enhancement of the lipid productivity and fatty acid methyl ester profile of Chlorella vulgaris by two rounds of mutagenesis. Bioresource Technology, 250: 764-769
2. Mitchell M C, et al. 2017. Pyrenoid loss impairs carbon-concentrating mechanism induction and alters primary metabolism in Chlamydomonas reinhardtii. Journal of Experimental Botany, 68(14): 3891-3902
3. Hulatt C J, et al. 2017. Polar snow algae as a valuable source of lipids? Bioresource Technology, 235: 338-347
4. Jouhet J, et al. 2017. LC-MS/MS versus TLC plus GC methods: Consistency of glycerolipid and fatty acid profiles in microalgae and higher plant cells and effect of a nitrogen starvation. PLoS ONE 12(8): e0182423
5. Angermayr S A, et al. 2016. Culturing Synechocystis sp. Strain PCC 6803 with N₂ and CO₂ in a Diel Regime Reveals Multiphase Glycogen Dynamics with Low Maintenance Costs. Appl. Environ. Microbiol., 82(14):4180-4189
6. Acu?a A M, et al. 2016. A method to decompose spectral changes in Synechocystis PCC 6803 during light-induced state transitions. Photosynthesis Research, 130(1-3): 237-249